date:2023-05-11 13:48:34
Ibidi 3孔/8孔/12孔可移除腔室載玻片
免疫熒光實驗
ibidi提供了一種簡單且經濟高效的方案，使用一片可移除的腔室載玻片進行細胞的培養，固定和染色，無需爬片，是倒置/正置顯微鏡以及長期樣品儲存的理想選擇。
本應用提供了一種使用ibidi8孔可移除腔室載玻片（80841）培養、固定和染色細胞的簡單方案。培養MCF-7細胞并用福爾馬林溶液固定。細胞核用DAPI染色，肌動蛋白骨架用DYE-490鬼筆肽染色。利用一級和二級抗體染色，通過免疫細胞化學可以探測其他細胞內結構。
實驗使用的材料和試劑：
· 8孔可移除腔室載玻片（ibidi，80841）
· 可移除腔室載玻片用的蓋玻片，24 x 60 mm（ibidi，10811）
· 細胞：MCF-7（CLS，300273）
· 細胞培養基
· 細胞培養試劑
· PBS緩沖液
· 福爾馬林中性緩沖液，10％（Sigma，HT5011）
· 染色試劑
o DAPI（Sigma，D954）
o DYE-490鬼筆環肽（Dynomics，490-33）
· 封片劑：FluoroshieldTM（Sigma，F6182）
實驗方案
細胞培養，固定，染色和成像觀察--都是在一個開放型小室中搞定：）
步驟1：
必須在預實驗中確定細胞系的正確接種濃度。根據您的細胞類型，用4-6x104細胞/ ml在2-3天內產生匯合的單層。
1.在無菌條件下，打開8孔可移除腔室載玻片（ibidi，80841）包裝。
2.像往常一樣用胰蛋白酶消化并計數細胞。細胞濃度為5×104細胞/ ml MCF-7。
3. 將400微升細胞懸浮液加入腔室的每個孔中。避免搖晃，因為這會導致細胞分布不均勻。
4. 用配套的蓋子蓋住。在37°C和5％CO2下培養。細胞至少培養24小時，或直到建立融合的單層。
步驟2：
固定是染色程序的第一步。目標是將細胞，細胞形成物或組織維持在其當前狀態，并在較長時間內通過化學試劑保存。
1.小心地吸出細胞培養基。
2.用PBS洗兩次。
3.加入400μl福爾馬林溶液。
4.在室溫下孵育30分鐘。
5.小心吸入福爾馬林溶液。
6.用PBS洗滌三次。
步驟3：
應根據感興趣的細胞結構選擇染色試劑。在該方案中使用DAPI和DYE-490鬼筆環肽染色MCF-7細胞的細胞核和肌動蛋白骨架。
1.準備你的染色溶液：
· PBS
· DYE-490鬼筆環肽
· DAPI 1μg/ml
2.小心吸出PBS。
3.移取400μl染色溶液到每個孔中
4.在室溫下避光孵育30分鐘
步驟4：
染色后清洗樣本可最大限度地減少背景信號
1.小心地吸出染色溶液
2.加入400μl緩沖液
3.小心地吸出緩沖液
4.重復步驟2和步驟3至少一次
步驟5：
從一個邊緣開始，用手或用鑷子小心地取下硅膠墊圈。該步驟應以緩慢，穩定的進行，以避免損壞細胞層。
步驟6：
完成染色程序后，必須在用顯微鏡成像之前封固樣品。該步驟還可防止樣品脫水。
1.將載玻片側面在干凈的實驗室濕巾上輕敲，去除樣品中多余的介質。
2.將封固劑涂在樣品上。用24 x 60毫米的蓋玻片覆蓋安裝好的樣品，小心地將蓋玻片放到安裝介質上，以避免夾住任何氣泡。
Tip：建議使用硬化封片劑，如FluoroshieldTM (Sigma-Aldrich), Vectashield? (Vector Laboratories Inc.), or ProLong Antifade? (ThermoFisher Scientific)。
3.等封片劑固定好。
步驟7：顯微觀察
在可移除8孔腔室載玻片中免疫染色的MCF-7細胞的熒光顯微鏡檢查。綠色：α-微管蛋白，紅色：F-肌動蛋白（鬼筆環肽），藍色：細胞核 (DAPI)。使用20倍物鏡拍攝寬場熒光圖像。
免疫熒光實驗實例
人眼的小梁網細胞，在 ibidi 8 Well Chamber 8孔可移除載玻片中。F-肌動蛋白絲顯示為綠色；細胞核被 DAPI（藍色）染色。圖片由中國香港香港理工大學視光學院的Samantha Shan提供。
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